Procedimiento De Análisis - BD ESwab Manual Del Usario

Fig 3. Torunda de recogida que muestra la línea de indicación del punto límite y el área para sostener el aplicador
No tocar el aplicador en el área
que hay debajo de la línea de
indicación del punto límite
Después de tomar la muestra con la torunda al paciente, la varilla del aplicador de torunda se rompe por la línea de
indicación del punto límite coloreado, doblando la varilla sobre el lado del tubo permitiendo así que la torunda caiga dentro
del tubo de BD ESwab del medio de transporte. A continuación, el operador desechará la parte de la varilla de la torunda
en un contenedor aprobado médicamente para la eliminación de desechos médicos. El tapón de rosca del tubo se volverá
a colocar y a fijar con firmeza. La acción de roscar el tapón en el tubo mueve el final de la varilla de la torunda rota en un
receptáculo acoplado y moldeado con forma de embudo en el tapón (consulte la figura 4). Esta forma de embudo moldeado
captura el final de la varilla del aplicador roto y lo ajusta firmemente al punto de encaje mediante sujeción de fricción.
Fig 4. Captura de la varilla rota del aplicador de torunda por el tapón del tubo de BD ESwab
En el laboratorio de pruebas, cuando el tapón de BD ESwab se desenrosca y se quita, la varilla del aplicador de torunda se
fija de manera segura al tapón. Esto permite al operador extraer de manera adecuada la torunda y realizar varios análisis
microbiológicos usando el tapón del tubo como un mango para sujetar y manipular la torunda. Debido a la flexibilidad de la
varilla de las torundas de punta de tamaño pequeño (220246 y 220532), la tapa de captura no se aplica, ya que puede que
el aplicador roto no se ajuste con firmeza en la tapa. Utilice pinzas estériles para extraer el aplicador del tubo o del tapón si
la torunda ha quedado parcialmente atrapada.
PROCEDIMIENTO DE ANáLISIS
Colocación en placas de los cultivos de muestras de BD ESwab en el laboratorio
Las muestras de BD ESwab deberían procesarse para cultivos bacteriológicos utilizando los medios de cultivo
recomendados y las técnicas de laboratorio que dependerán del tipo de muestra y el organismo que se esté investigando.
Para obtener información sobre medios de cultivos recomendados y técnicas para el aislamiento e identificación
de las bacterias de las muestras clínicas mediante torundas, consulte los manuales y directrices publicados sobre
microbiología 14,17,20-22 .
Las investigaciones de cultivos de muestras de torundas para la presencia de bacterias aeróbicas, anaeróbicas y bacterias
exigentes, como Neisseria gonorrhoeae, suponen el uso rutinario de medios de cultivo de agar sólidos en placas de Petri. El
procedimiento para la inoculación de muestras de BD ESwab en un agar sólido en placas de Petri es de la siguiente manera.
1. Agite con fuerza el tubo de BD ESwab que contiene la muestra de torunda con el pulgar y el índice durante 5 s o mezcle
el tubo con un agitador vórtex durante 5 s para liberar la muestra de la punta de la torunda. Disperse uniformemente y
suspenda la muestra del paciente en el medio de transporte líquido.
2. Desenrosque el tapón de BD ESwab para extraer el aplicador de torunda.
3. Pase la punta del aplicador de BD ESwab sobre la superficie de un cuadrante de la placa de medios de cultivo para
proporcionar el inóculo primario.
4. Si es necesario cultivar la muestra de torunda en las placas de medios de cultivo adicionales, devuelva el aplicador de
BD ESwab al tubo del medio de transporte durante dos segundos para absorber y recargar la punta del aplicador con la
suspensión del medio de transporte/muestra del paciente y después repita el paso 3.
El procedimiento descrito anteriormente utiliza el aplicador de BD ESwab como una varilla de inoculación para transferir la
suspensión de la muestra del paciente en el medio del transporte sobre la superficie de una placa de cultivo, creando así
el inóculo primario (consulte la figura 5). Por otra parte, el operador puede usar un mezclador tipo vórtex o mezclar el tubo
de BD ESwab con la torunda dentro durante 5 s y transferir a continuación volúmenes de 100 µL de la suspensión en cada
placa de cultivo mediante un pipeteador volumétrico y puntas de pipeta estériles. Se deberán usar técnicas de laboratorio
estándar para extender el inóculo primario de la muestra del paciente por la superficie de la placa de cultivo (consulte la
figura 6).
Durante la recogida de muestras,
sostener el aplicador por encima
de la línea de indicación del
punto límite en esta área
Punto límite grabado con
una línea de indicación de color
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